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      瓊脂糖核酸電泳操作步驟詳解

      更新時間:2025-09-25  |  點擊率:748

        瓊脂糖核酸電泳操作步驟詳解

        1. ?實驗前準備?

        儀器檢查?:確認電泳儀電源、電壓調節旋鈕及電極連接正常,凝膠成像系統光源和軟件功能完好?。

        試劑配制?:

        根據DNA片段大小選擇瓊脂糖濃度(0.5%-2%),如大片段(>1kb)用0.5%-1%,小片段(<1kb)用1.5%-2%?。

        緩沖液常用TAE或TBE,需檢查pH值(TAE為8.0,TBE為8.3)及是否變質?。

        安全防護?:佩戴手套,避免接觸溴化乙錠(EB)等致癌染料,推薦使用安全替代品(如GelRed)?。

        2. ?凝膠制備?

        溶解瓊脂糖?:

        稱取瓊脂糖干粉,按比例加入緩沖液(如1%凝膠:0.3g瓊脂糖+30mL TAE)?。

        微波爐高火加熱1-2分鐘至溶解,避免沸騰溢出?。

        加染料與倒膠?:

        冷卻至50-60℃后加入核酸染料(如EB替代物),混勻?。

        緩慢倒入制膠模具,避免氣泡,厚度3-5mm,靜置30-45分鐘凝固?。

        3. ?電泳操作?

        安裝凝膠?:

        凝固后輕拔梳子,將凝膠放入電泳槽,加入緩沖液至液面略高于膠面1mm?。

        上樣?:

        樣品與6×Loading Buffer按10:1混合,緩慢加入加樣孔,避免穿破凝膠?。

        電泳參數?:

        電壓60-100V,DNA由負極(黑色)向正極(紅色)遷移?。

        大片段DNA(>2kb)建議5-8V/cm電壓,避免高電壓導致條帶模糊?。

        4. ?結果觀察與分析?

        終止電泳?:當溴酚藍遷移至凝膠2/3處時停止?。

        成像檢測?:紫外燈或凝膠成像儀觀察條帶,與Marker對比判斷DNA大小?。

        常見問題與優化

        條帶異常?:可能因DNA構象(超螺旋/線性)或瓊脂糖質量差異導致遷移率不同?。

        電壓影響?:高電壓加速小片段遷移,但對大片段效果有限?。


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        注:以上僅供參考,科研使用,不作為實際數據,實驗需嚴格遵循說明或咨詢技術老師。

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